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知识分享:ELISA检测试剂盒实验显色与比色分析
ELISA检测试剂盒的显色与比色分析是决定实验结果准确性的核心环节,直接影响最终定量数据的可靠性,以下从原理、操作要点、常见问题等维度展开详细说明。
一、显色反应核心原理
核心反应体系:常规ELISA使用HRP(辣根过氧化物酶)作为标记酶,搭配TMB作为显色底物,分为A、B两种组分。A液提供醋酸钠~柠檬酸缓冲体系,B液提供TMB显色母液。
反应过程:TMB在HRP酶的催化作用下被氧化,反应液从无色逐渐变为可溶性蓝色;加入酸性终止液后,蓝色产物进一步质子化,最终转化为稳定的黄色,颜色深浅与待测物浓度正相关。
显色液基础配方:A液为醋酸钠13.6g、柠檬酸1.6g、30%双氧水0.3ml,加蒸馏水定容至500ml;B液为乙二胺四乙酸二钠0.2g、柠檬酸0.95g、甘油50ml、0.15g TMB,加蒸馏水定容至500ml。
二、显色操作关键规范
试剂准备:显色A、B液需提前恢复至室温,使用前按说明书推荐比例(通常1:1)现配现用,避免提前混合导致底物失活。
孵育条件:加入显色液后需将微孔板置于37℃恒温环境避光孵育,常规孵育时长为10——15分钟,可根据预实验中最高浓度标准孔的颜色深浅微调时长。
终止操作:按每100μL显色体系加入50μL 2mol/L硫酸终止液,加液顺序需与显色加样顺序保持一致,避免不同孔的显色时长差异过大。
三、比色分析操作要点
读数时间窗口:加入终止液后需在15分钟内完成读数,超过该时间窗口黄色产物会逐渐褪色,导致吸光度数值偏低。
参数设置:使用酶标仪选择450nm主波长进行检测,可搭配630nm作为参考波长,扣除微孔板本身的背景干扰,降低孔间差异。
定量逻辑:吸光度(OD值)与待测物浓度呈正相关,通过梯度标准品的浓度与对应OD值绘制标准曲线,即可换算出待测样本中目标物质的实际含量。
四、常见异常问题与解决方法
非特异性显色:全板背景偏蓝,多由洗涤不充分、封闭液封闭时间不足或底物液被污染导致,需增加洗涤次数、延长封闭时间,更换新鲜底物液。
显色不均:同一排孔颜色深浅差异大,多因显色液加样不均、孵育时板底与加热模块接触不充分导致,需使用多道移液器加样,孵育前确认板体贴合加热台。
空白孔OD值过高:空白孔吸光度超过0.1,多由试剂交叉污染、酶标试剂残留未洗净导致,需重新优化洗板程序,更换全新的空白试剂。
注:以上资料仅供参考,不作为实际数据,实验需严格遵循说明或咨询技术老师。
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